1 產(chǎn)品組成

1）50X 樣本提取液（2 瓶）；

2）酶試劑（2 瓶）；

3）顯色劑（2 瓶）；

4）底物（2 瓶）；

5）說明書（1 份）。

2 試劑配制

樣本提取工作液：用純凈水以 49：1 的體積進(jìn)行稀釋（即 1 份 50x 樣品提取液+49 份純凈水）。配制方法：取出附件箱中 200mL 磨口玻璃瓶，加純凈水到 200mL 刻度線，用 5mL 移液器取 4mL 50X 樣本提取液加入，搖勻貼上標(biāo)簽（標(biāo)簽內(nèi)容“農(nóng)殘樣本提取工作液"），使用后放冰箱保存，下次使用前請回溫至 20℃-30℃,溶液可反復(fù)使用。

3 樣本提取

1）蔬菜瓜果：取（2.0±0.01）g 果蔬樣品（塊莖類取(4.0±0.01)g）剪成 1cm 左右碎片，放入小燒杯中；加入 10mL 樣本提取工作液，振蕩 2min；

2）辛辣蔬菜：?。?.0±0.01）g 果蔬樣品剪成 1cm 左右碎片，放入小燒杯中；加入 10mL 樣本提取工作液，振蕩 2min 于 90℃以上水浴 10min，冷卻至室溫待測；

3）茶葉：取(1.0±0.01)g 鮮茶放入小燒杯中，加入 10mL 樣本提取工作液，靜置 2min，取出提取液，靜置 2min 待測。注：樣本提取中若浸提液混濁，或浸提液色素干擾嚴(yán)重，可用活性炭進(jìn)行脫色：即將浸提液轉(zhuǎn)移至另一瓶中，加入(0.1-0.5)g 活性炭（根據(jù)顏色深淺進(jìn)行調(diào)整），過濾待測。

4 測試

1）對照測試：于專用反應(yīng)瓶（或 4mL 離心管）中加入 2.5mL 樣本提取工作液，再分別加入 100μL 酶試劑，100μL 顯色劑和 100μL 底物，混勻，并立即倒入 1cm 比色皿中，按儀器“對照"鍵并清零后，放入測試通道，測試吸光度變值ΔΑ0。對照值ΔΑ0 需符合酶活性要求（注意事項(xiàng) 6.1）才可進(jìn)行樣品的測試；

2）樣品測試：于專用反應(yīng)瓶中加入 2.5mL 待測樣品清液，再加入 100μL 酶試劑，混勻，室溫下放置10min 后，加入 100μL 顯色劑和 100μL 底物，搖勻并立即倒入 1cm 比色皿中，于儀器選中“樣品種類"，放入測試通道，測試吸光度變化值ΔΑt。

5 結(jié)果判定

1）以分光光度計(jì)測試時(shí)，按以下表達(dá)式計(jì)算出抑制率：抑制率(%)=[(ΔΑ0－ΔΑt)/ΔΑ0]×99%；樣品的抑制率在 40%～50%之間為可疑農(nóng)殘超標(biāo)樣品，抑制率大于 50%為農(nóng)殘超標(biāo)樣品，表明被測樣品的農(nóng)藥殘留可能超過安全的界定標(biāo)準(zhǔn)，建議用氣相色譜等作進(jìn)一步分析確認(rèn)；

2）以農(nóng)殘檢測儀，多功能儀檢測時(shí)其抑制率一般可自動(dòng)計(jì)算。樣品的抑制率在 40%-50%之間為可疑農(nóng)殘超標(biāo)樣品，抑制率大于 50%為農(nóng)殘超標(biāo)樣品，表明被測樣品的農(nóng)藥殘留可能超過安全的界定標(biāo)準(zhǔn)，建議用氣相色譜等作進(jìn)一步分析確認(rèn)。

6 注意事項(xiàng)

1）酶活性要求：參照 GB/T 5009.199-2003，1min 內(nèi)的對照值（ΔΑ0）在 0.15-0.3 之間；3min 內(nèi)的對照值（ΔΑ0）應(yīng)大于 0.3；

2）保存：試劑盒應(yīng)保存 4℃冰箱，保質(zhì)期 12 個(gè)月；

3）使用：任何試劑使用時(shí)，用一瓶打開一瓶，用完后才使用新的，防止變質(zhì)；

4）器具專用原則：任何用于移液的器具和容器都應(yīng)各自貼上標(biāo)簽，單獨(dú)使用，以免交叉污染；5）試劑只出不入原則：測試時(shí)，從任何試劑瓶吸出的試劑，禁止再次注射回試劑瓶；

6）常溫測試：試劑盒使用之前，所有試劑應(yīng)恢復(fù)到室溫，當(dāng)環(huán)境溫度過低時(shí)（一般低于 20℃），測試時(shí)需作必要保溫措施。